创伤性脑损伤(TBI)是指由于外部机械力的作用导致大脑的损伤。脑外伤幸存者遗留下的短暂或永久的躯体功能障碍、认知障碍以及心理障碍是临床工作中经常遇到的问题。为了更好的研究这些问题的发病机制,了解路脑外伤病理生理过程,并制定出新的治疗方法,建立良好的动物模型显得至关重要。虽然较大的动物在体型和生理上与人类更接近,但由于啮齿类动物模型低成本,占用空间较小以及对结果易于进行评估。在大鼠的实验动物模型中,打击型致伤机制通过可控性的外力来调节对大脑造成的损伤程度,进而量化研究不同损伤情况下的病理生理机制,对指导治疗和预后评估更有意义。其中3种模型应用较广泛:落体打击模型,液压脑损伤模型,控制性皮质撞击模型。

本实验主要采用的Feeney落体打击模型进行造模,该模型造模前需要手术暴露完整的硬脑膜,落体打击作用于完整的硬脑膜,造成皮质挫伤,损伤的严重程度通过改变落体重量和高度来调节。可以复制出人类脑外伤中的脑震荡、脑挫裂伤、外伤性轴索损伤、脑出血等病理改变。该模型优点:实验可控,可复制分级脑损伤;实验可重复性,相同致伤外力组内各只动物所受脑损伤程度、范围及脑损伤病理生理反应基本一致;实验作用外力参数可调、易控制,实验动物选择范围也较多。

SD大鼠脑外伤动物模型的建立

按自制改良的Feeney』s自由落体方法(由脑立体定位仪、固定架、带孔的光滑不锈钢导管、下落砝码、T型撞杆、挡片组成,使用时挡片插入一定高度的不锈钢导管内,放入砝码,T型撞杆置于硬脑膜上,迅速拔出当挡片砝码以自由落体的速度撞击T型撞杆,后者直接打击硬脑膜,造成颅脑损伤模型)制作大鼠重型颅脑损伤模型。

造模前,大鼠禁食8h;大鼠经称重,用7%水合氯醛麻醉(0.5ml/100g),如果不禁食,术后很容易引起大鼠腹胀气。用剃毛刀理去大鼠头顶的毛发,进行备皮,碘伏常规消毒后,于矢状正中切开头皮,长约3-4cm。

开创后用两个动脉夹分别夹住切口两侧,利用动脉夹的重力撑开使颅骨暴露。剥开软组织,剥离骨外膜,暴露左侧顶骨,在冠状缝后1.5mm,中线旁左侧2.5mm处(根据不同客户的需求进行定位),用高速颅骨钻钻1个小孔,并扩大为直径5mm的骨窗,保持硬脑膜完整。注意事项有如下几点:1 骨外膜必须剥离干净,颅骨直接暴露,否则钻孔时易损伤钻头、骨窗打磨不易控制。2 打磨骨窗时可先用最小的颅骨钻定位磨一个区域(一个圆圈),方便确定直径大小,磨骨窗时要有耐心。3 待磨至一点有落空感时,可向其他方向磨,最后向上提起圆圈中间部分,不易造成损硬脑膜损伤。

将T型撞杆置于硬脑膜外,此时不放砝码,向上调节撞针2-3mm,使得用40g 砝码从25cm高处沿导管呈自由落体冲击于T型撞杆时(将挡片突然抽出),可以使得压缩深度是2-3mm(根据客户要求),不打穿硬脑膜,造成局部脑挫裂伤,致使冲击力为1000g/cm(40g×25cm),打击后,立即从致伤位置解除,以免二次击伤。

骨蜡封闭骨窗,用干净镊子将一块骨蜡置于骨窗上,然后用镊子沿骨窗边缘向下挤压(向外扩张)进行封闭。逐层缝合头皮,用止血钳夹一下缝合的伤口,酒精棉球擦拭,取下耳杆、大鼠,肌肉注射青霉素抗感染,把动物放回饲养笼内,术后注意保温。

注意事项:

日常维护:

1 轻拿轻放,避免仪器碰撞而受损。

2 选择实验对象不要超过仪器的适用范围。

3实验结束后要及时清理仪器,保证其精确性。

实验过程:

1 首先参照大鼠脑立体定点阵图谱或者文献确定脑内注射部位的坐标,包括前囟前或后多少mm,中线左或右多少mm,颅骨下深度为多少mm。

2 麻醉大鼠,然后固定在脑立体定位仪上,主要是固定鼻端和两耳部位,固定后大鼠的头部是不能动的,前囟与后囟应位于同一平面,大鼠脑袋不能隆起。

3 剪去大鼠头顶部毛,皮肤表面消毒,然后根据需要纵向或者横向剪开皮肤,用棉球和眼科剪刀除去颅骨表面的脑膜,过一会颅骨干燥后找到前囟部位(靠前部的十字交叉点),以前囟部位为原点,参考定位坐标斤进行手术操作。

本内容来自威斯腾生物


推荐阅读:
相关文章